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膠帶剝到第幾次該停?給角質(zhì)層深度一把可見(jiàn)的標(biāo)尺

來(lái)源:軻潤(rùn)實(shí)驗(yàn)器材(上海)有限公司   2026年08月07日 14:40  

在經(jīng)皮給藥或化妝品滲透研究中,研究者常按固定次數(shù)貼撕膠帶——前臂20次、腹部30次。問(wèn)題是:不同個(gè)體的角質(zhì)層厚度、部位角化程度差異很大,固定次數(shù)要么沒(méi)剝透,要么已經(jīng)傷到顆粒層。更麻煩的是,若后續(xù)要用同一條膠帶做蛋白、脂質(zhì)或RNA分析,必須先知道“這條膠帶到底取了多少角質(zhì)量”,否則數(shù)據(jù)無(wú)法歸一化。

 

傳統(tǒng)上有三條路。一是稱重法:貼前貼后稱量膠帶,差值即為角質(zhì)量。它直接,但易受靜電、殘留賦形劑和濕度干擾,且操作繁瑣。二是蛋白提取法(如BCA):把膠帶上的蛋白洗下來(lái)定量,準(zhǔn)確性高,但破壞樣本,無(wú)法再做下游檢測(cè)。三是比色法:在膠帶上直接顯色,成本低,但步驟多、批次穩(wěn)定性差,樣本同樣被破壞。[3]

 

紅外光密度法(IR-D)提供了另一種思路。以Labodorf 850C皮膚角質(zhì)量測(cè)試儀為例,它用約850 nm紅外光照射貼有角質(zhì)層的膠帶,測(cè)量光強(qiáng)衰減,再通過(guò)與蛋白含量的標(biāo)準(zhǔn)曲線換算,快速得到該條膠帶的角蛋白量。膠帶測(cè)完后仍可保留,用于后續(xù)的蛋白組學(xué)、炎癥因子或脂質(zhì)分析。

 

Hahn等2010年在《Skin Pharmacol Physiol》發(fā)表的研究[1]可以說(shuō)明這一方法的價(jià)值。他們用紅外密度法對(duì)體外人皮進(jìn)行膠帶剝離,將IR-D計(jì)算的角質(zhì)層深度與BCA蛋白測(cè)定結(jié)果對(duì)比,發(fā)現(xiàn)新鮮皮膚與?26 °C冷凍保存1周、1個(gè)月乃至3個(gè)月的皮膚,兩者一致性良好。研究還發(fā)現(xiàn),當(dāng)IR-D讀數(shù)低于定量下限定時(shí)間,剩余角質(zhì)層不足總量的5%,這意味著研究者可以據(jù)此判斷“是否已經(jīng)剝透”,而不是憑經(jīng)驗(yàn)固定次數(shù)。

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另一項(xiàng)來(lái)自Clausen等2016年《Sci Rep》的研究[2]則展示了它在疾病研究中的應(yīng)用。團(tuán)隊(duì)用IR-D對(duì)特應(yīng)性皮炎(AD)患者與健康對(duì)照進(jìn)行膠帶剝離,比較總蛋白與可溶性蛋白含量。結(jié)果顯示,AD皮損區(qū)可溶性蛋白占比高達(dá)82%,而健康皮膚僅為17%–24%;同時(shí),AD患者總蛋白量顯著低于健康對(duì)照。這類差異如果缺少快速蛋白定量手段,很難在大規(guī)模樣本中系統(tǒng)捕捉。

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選型時(shí)不必迷信單一指標(biāo)。如果你的目標(biāo)是快速判斷有沒(méi)有剝透,同時(shí)還想把膠帶留下來(lái)做后續(xù)分析,那選IR-D是第一選擇。如果實(shí)驗(yàn)對(duì)絕對(duì)蛋白濃度的要求特別高,那還是建議先拿BCA法做一部分樣本的方法學(xué)驗(yàn)證作為對(duì)照。要是只是為了初步篩查,經(jīng)費(fèi)又不太寬裕,用稱重法也能湊合用,就是環(huán)境濕度、溫度這些條件要控制好,不然數(shù)據(jù)容易亂飄。

 

常見(jiàn)問(wèn)答:

紅外光密度法測(cè)出來(lái)的到底是水分還是蛋白?

測(cè)的是膠帶上面角質(zhì)層蛋白對(duì)紅外光的吸收,這個(gè)吸收值和蛋白含量是線性相關(guān)的,跟皮膚含水量沒(méi)關(guān)系。

 

測(cè)完之后,膠帶還能不能用來(lái)做別的檢測(cè)?

可以。這個(gè)方法不會(huì)破壞樣品,后續(xù)想做什么蛋白、脂質(zhì)、RNA或者組學(xué)分析,膠帶照樣能拿來(lái)用。

 

不同部位需不需要單獨(dú)建標(biāo)準(zhǔn)曲線?

前臂、面部還有膚色偏深的部位,回歸曲線的斜率會(huì)有點(diǎn)差別。建議要么按實(shí)際采樣的部位重新校準(zhǔn),要么直接引用對(duì)應(yīng)部位已有的校準(zhǔn)曲線來(lái)?yè)Q算。

 

參考文獻(xiàn):

1. Hahn T, Hansen S, Neumann D, et al. Infrared densitometry: a fast and non-destructive method for exact stratum corneum depth calculation for in vitro tape-stripping. Skin Pharmacol Physiol. 2010;23(4):183-192. DOI: 10.1159/000288165

2. Clausen ML, Slotved HC, Krogfelt KA, Agner T. Tape stripping technique for stratum corneum protein analysis. Sci Rep. 2016;6:19918. DOI: 10.1038/srep19918

3. Mohammed D, Hadgraft J, Lane ME. Comparison of gravimetric and spectroscopic approaches to quantify stratum corneum removed by tape-stripping. Eur J Pharm Biopharm. 2012;82(2):368-372.


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