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技術(shù)文章

流式細(xì)胞術(shù)介紹及常見問題分析

發(fā)布時間:2016-8-18

目前,流式細(xì)胞術(shù)廣泛應(yīng)用于細(xì)胞表面和細(xì)胞內(nèi)分子表達(dá)特征的分析,界定不同種類的細(xì)胞群,測定分離出的亞類純度,分析細(xì)胞的大小和總量,它可以同時分析單個細(xì)胞的多個參數(shù)。它主要用于檢測標(biāo)記在抗體上的熒光強(qiáng)度,這些熒光抗體則可以檢測與特定細(xì)胞分子結(jié)合的蛋白或配體,如與 DNA 結(jié)合的溴化丙啶 (PI)等。

染色步驟包括:將培養(yǎng)的細(xì)胞或組織樣品制成單細(xì)胞懸液,然后將細(xì)胞放入管子或酶標(biāo)板中與熒光標(biāo)記或未標(biāo)記的抗體孵育。之后將細(xì)胞放入流式細(xì)胞儀中進(jìn)行分析。

懸浮緩沖液中染色的細(xì)胞樣品通過流式細(xì)胞儀時,由于鞘液的作用被限制在液流的軸線上,從而通過一個非常小的噴嘴。這種微小的"流液束"使細(xì)胞一個接一個地通過激光,細(xì)胞/粒子通過通道時散射的光線被多個探測器檢測到。其中光柱前有一個檢測器(稱為前向角散

射或簡稱 FSC),它的旁邊有幾個檢測器(稱為側(cè)向散射或簡稱 SSC)。熒光檢測器用于檢測熒光染料本身。粒子/細(xì)胞通過光束時,將出現(xiàn)光線散射,散射會通過前向散射和側(cè)向散射被檢測到。散射和熒光數(shù)據(jù)會結(jié)合起來分析。其中前向角散射光與細(xì)胞的大小有關(guān);而側(cè)向角散射則依賴于粒子/細(xì)胞的密度(比如胞漿顆粒數(shù)量,細(xì)胞膜尺寸),并往往以這種方式,根據(jù)不同的大小和密度的差異而將細(xì)胞群區(qū)分開來。當(dāng)由相應(yīng)激發(fā)波長的激光激發(fā)時,用于檢測或染色的熒光染料就會發(fā)光。這些粒子/細(xì)胞就可分別被檢測并進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。

 

直接染色:

 

直接免疫熒光染色時,細(xì)胞與直接結(jié)合有熒光染料(如 FITC 標(biāo)記)的抗體孵育。它的優(yōu)點在于只需要抗體孵育這一個步驟,從而消除了來自二抗的非特異性結(jié)合的可能性。這對細(xì)胞內(nèi)染色特別有用,由于大的抗體熒光分子復(fù)合物包括二抗被困在細(xì)胞內(nèi)造成背景,或甚至無

法進(jìn)入細(xì)胞,阻止了一抗的檢測。

 

間接染色:

 

間接染色時,一抗不是熒光染料直接標(biāo)記的,而是通過熒光染料標(biāo)記的二抗檢測。另外可選擇使用親和-生物素系統(tǒng),即抗體與生物素結(jié)

合并且通過熒光染料標(biāo)記的親和素來檢測。隨著標(biāo)記二抗越來越多的應(yīng)用,可針對不同的目標(biāo)蛋白制出未標(biāo)記的一抗,然后用標(biāo)記二抗進(jìn)

行流式細(xì)胞儀分析,這拓寬了研究者對目標(biāo)蛋白的選擇范圍。

 

細(xì)胞內(nèi)染色:

 

應(yīng)用流式細(xì)胞術(shù)的細(xì)胞內(nèi)源性抗原在染色時,應(yīng)采取各種不同的固定和通透方法,以使抗體能接近胞內(nèi)蛋白。

任何情況下,要獲得成功的染色都必須對實驗條件進(jìn)行優(yōu)化,包括測定抗體效價,采用合適的對照設(shè)定流式細(xì)胞儀,并且(如有必要)優(yōu)

化樣品的固定和通透方法。

 

選擇熒光結(jié)合染料

 

對一個給定的抗體,從陰性中分辨出陽性細(xì)胞的能力,往往取決于所用的熒光結(jié)合染料。

各種熒光染料相對強(qiáng)度的一般準(zhǔn)則是,從zui亮到zui暗,PE(藻紅蛋白),PE-Cy7PE-Cy5,APC > APC- Cy7,Alexa Fluor 47Alexa

Fluor 700 > FITC,Pacifi c Blue,Alexa Fluor 488。這是使用信噪比的一般模式,但對于個別抗體仍有些差異。

一個高表達(dá)的抗原通??梢员粠缀跛械臒晒鈭F(tuán)分辨。一個低強(qiáng)度表達(dá)的抗原可能需要使用較亮的 PE APC,提信噪比,把未染色細(xì)胞中足夠分離出陽性細(xì)胞。

熒光染料強(qiáng)度的相對差異取決于儀器,這是因為在不同的儀器上激光和過濾器的組合差異。一定要使用適當(dāng)?shù)?/span>FACS

 

流式細(xì)胞術(shù)常見問題分析

 

無信號/熒光強(qiáng)度弱

 

不正確的信號補(bǔ)償

檢查流式細(xì)胞儀陽性單一顏色對照是否正確,通道和補(bǔ)償設(shè)置是否能正確地捕獲所有粒子。

沒有足夠的抗體來檢測

增加抗體的量/濃度

無法接近細(xì)胞內(nèi)目標(biāo)

檢查目標(biāo)蛋白是否在細(xì)胞內(nèi)。對于胞內(nèi)染色,確保有足夠的通透性。為防止細(xì)胞表面蛋白質(zhì)的內(nèi)化,該過程應(yīng)用冰冷的試劑,在冰上或 °C

進(jìn)行,以終止一切反應(yīng)。加入疊氮鈉可防止表面抗原的修飾和內(nèi)化帶來的熒光強(qiáng)度的損失。對于細(xì)胞系染色,胰蛋白酶可以引起細(xì)胞表面

蛋白質(zhì)的內(nèi)化,尤其是細(xì)胞表面分子,可能需要更溫和的分離方法。

細(xì)胞內(nèi)染色結(jié)合熒光分子太大

對細(xì)胞內(nèi)染色實驗,熒光分子應(yīng)具有較小的分子量。大分子量熒光染料會降低抗體的動力和其進(jìn)入細(xì)胞的可能性。

激光器未對齊

確保流式細(xì)胞儀的激光器正確對齊,必要時通過運行液流檢查微球來調(diào)整路線。如果激光器不能正確對準(zhǔn)或發(fā)生漂移時,您可能需要考慮

此機(jī)的客服。

目標(biāo)蛋白不存在或處于低水平表達(dá)

確保組織或細(xì)胞類型表達(dá)的目標(biāo)蛋白處于一個足夠檢測的量。

可溶性或分泌型目標(biāo)蛋白

目標(biāo)蛋白是否可溶并從細(xì)胞內(nèi)分泌?需要嵌合在細(xì)胞膜上或存在于細(xì)胞質(zhì)里以便流式細(xì)胞儀能很容易檢測到。通過高爾基體封閉的步驟,

比如加入 Brefaldin A,可提高細(xì)胞內(nèi)染色信號。

補(bǔ)償過高或增益過低

使用陽性對照再次設(shè)置流式細(xì)胞儀,利用補(bǔ)償以確保細(xì)胞的熒光信號不被切斷,提高增益以增強(qiáng)信號(在合理的范圍內(nèi))。

熒光分子的熒光逐漸消退

抗體可能放置時間太長或沒有避光,新鮮抗體是必需的。

一抗和二抗不匹配

二抗應(yīng)該是和一抗來源物種相同(例如*抗體來源于兔,就要使用抗兔的第二抗體)。

 

熒光強(qiáng)度過高

 

抗體濃度過高

這將導(dǎo)致較高的非特異性結(jié)合或非常高的熒光強(qiáng)度。減少每個樣本中加入的抗體量。

過量抗體被困

這是細(xì)胞內(nèi)染色*的問題,較大的熒光分子使抗體被困在細(xì)胞中。確保洗滌步驟充分,包括在洗滌緩沖液中加入吐溫或 Triton

封閉不足

與封閉步驟一樣,抗體中加入1-3% 封閉試劑。

 

背景高或陽性細(xì)胞百分比高

 

增益設(shè)置過高或補(bǔ)償過低

使用陽性對照再次設(shè)置流式細(xì)胞儀,用補(bǔ)償減少小顆粒背景并減少增益以降低信號。

抗體過量

降低抗體濃度。您還可以在洗滌緩沖液中添加去污劑,以確保洗去多余的抗體。__

 

觀察到兩個或多個細(xì)胞群但應(yīng)該只有一群細(xì)胞

 

不止一類細(xì)胞表達(dá)目的蛋白

檢查樣品中所有細(xì)胞類型的預(yù)期表達(dá)水平,如果必要確保細(xì)胞充分分離。

出現(xiàn)細(xì)胞雙峰

細(xì)胞雙峰在圖上顯示兩倍的熒光強(qiáng)度的第二種細(xì)胞類型。染色前輕輕地混合細(xì)胞,在放入流式細(xì)胞儀前用吸管再次混勻,也可以篩選或過

濾細(xì)胞以除去團(tuán)塊(30 μm 的尼龍網(wǎng))。

側(cè)向散射背景偏高(來自小顆粒)

細(xì)胞裂解

確保樣品中細(xì)胞沒有裂解和破裂。樣品應(yīng)是新鮮的并且是正確制備的。細(xì)胞不能高轉(zhuǎn)速離心或劇烈震蕩。

細(xì)菌污染

確保樣品不受污染。細(xì)菌會低水平自發(fā)熒光,這也會導(dǎo)致高粒子率。

 

低粒子率

 

每毫升的細(xì)胞數(shù)量太少

制備 × 10 6 個細(xì)胞/ml。確保細(xì)胞充分混合(操作要輕)。

細(xì)胞聚集,阻塞管道

染色前輕輕吹打幾次確保形成同源單細(xì)胞懸液。確保運行之前再次混勻。在的情況下,可篩選或過濾細(xì)胞以去除團(tuán)塊(30 μm 的尼龍網(wǎng))。

 

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